如何選擇*化的包被條件?

1.包被抗原的選擇

包被抗原可分為天然蛋白、重組蛋白和小分子抗原三大類。天然蛋白需經(jīng)純化才能用直接吸附

法包被，對(duì)于含雜質(zhì)較多的抗原可以采用間接捕獲法包被(先用能夠與目的抗原反應(yīng)的物質(zhì)如抗

體直接吸附在酶標(biāo)板上，再通過(guò)特異性反應(yīng)使抗原固相化)。經(jīng)純化的重組蛋白一般皆可直接包

板。小分子抗原比如多肽以及一些小分子有機(jī)化合物，由于分子量太小，往往難于直接吸附在

酶標(biāo)板上，一般都先使其與無(wú)關(guān)蛋白質(zhì)如BSA等偶聯(lián)，偶聯(lián)物吸附于固相載體上。

2.包被液的選擇

一般常用的是pH9.6的碳酸鹽緩沖液，如果包被的抗原在堿性條件下不穩(wěn)定的話，也可以使用

pH7.2的磷酸鹽緩沖液。

3.包被溫度的選擇

通常是4-8度條件下過(guò)一夜或者37度保溫2小時(shí)，我們強(qiáng)烈建議4-8度條件下包被，有利于蛋白

活性的保持。

4.包被濃度的選擇

包被的Z適濃度隨固相載體和包被物的性質(zhì)變化，一般蛋白質(zhì)的包被濃度為1-5ug/ml，要明確

針對(duì)特定包被抗原的Z適包被濃度需要通過(guò)實(shí)驗(yàn)來(lái)確定。

包板后需要封閉嗎?應(yīng)該選擇什么樣的封閉體系?

封閉是否必要，取決于ELISA的模式及具體的實(shí)驗(yàn)條件。一般說(shuō)來(lái)，雙抗體夾心法，只要酶標(biāo)

記物是高活性的，操作時(shí)洗滌*，不經(jīng)封閉也可得到滿意的結(jié)果。而在間接法測(cè)定中，封閉

一般是*的。

常用的封閉劑有0.05%-0.5%的BSA、10%的小牛血清、1%明膠、5%的脫脂奶粉，AbMART推薦使

用5%脫脂奶粉，價(jià)廉而且封閉能力強(qiáng)，不過(guò)5%脫脂奶粉只適合短期內(nèi)使用，不宜長(zhǎng)期保存，所

以試劑盒中較少使用。